海藻糖合成酶(TS)测试盒/微量法说明书

测定意义：

海藻糖是功能性低聚糖，具有非还原性、保湿性、热酸稳定性、抗冻结性等特性，是细胞在不良环境条件下产生的一种重要的抗逆应激物之一，它对生物大分子和生物体组织有着非特异性的保护作用。海藻糖合成酶（Trehalose Synthase）催化麦芽糖合成海藻糖，是海藻糖生物合成的关键途径之一。

测定原理：

TS 催化麦芽糖产生海藻糖，使用糖化酶分解剩余麦芽糖为葡萄糖，通过葡萄糖氧化酶法测定葡萄糖含量，按照麦芽糖减少的量表示海藻糖合酶活性。
需自备的仪器和用品：
酶标仪、水浴锅、可调式移液器、96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：液体 60mL×1 瓶，4℃保存；
试剂一：液体 12mL×1 瓶，4℃保存；
试剂二：液体 12ml×1 瓶，4℃保存，充分混匀，如有沉淀，静置后取上层清液使用；
试剂三：液体 10ml×1 瓶，4℃避光保存；
试剂四：液体 10ml×1 瓶，4℃避光保存；
样品测定的准备：
1、细菌或细胞的处理：收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104 个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3S，间隔 10S，重复 30 次）；8000g，4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
2、组织的处理：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL提取液），冰浴中匀浆。8000g ，4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
测定步骤：
1、在 EP 管中加入如下试剂

混匀，40℃水浴反应 2h，95℃水浴 10 分钟终止反应，冷却至室温。

混匀，室温反应 30min，于 505nm 下测定吸光值 A 对照与 A 测定，ΔA=A 对照-A 测定。

每个测定管设一个对照管。
TS 活力计算： 
1、标准条件下测定回归方程为 y = 0.3735x - 0.0014，R2 = 0.9999；x 为标准品浓度（μmol/mL），y 为吸光值。
2、按照蛋白浓度计算 
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
TS 活力(nmol/min/mg prot)=(ΔA+0.0014) ÷0.3735×V 反总÷(V 样×Cpr)÷T×1000÷2 =33.5×(ΔA+0.0014) ÷Cpr
3、按样本鲜重计算 
单位的定义：每 g 组织每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。 TS 活力(nmol/min/g 鲜重)=(ΔA+0.0014) ÷0.3735×V 反总÷(W ×V 样÷V 样总) ÷T×1000÷2=33.5×(ΔA+0.0014)÷W
4、按细菌或细胞密度计算 
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟催化 1nmol 麦芽糖产生 1nmol 海藻糖定义为一个酶活力单位。
TS 活力(nmol/min/104 cell)=(ΔA+0.0014) ÷0.3735×V 反总÷(500 ×V 样÷V 样总) ÷T×1000÷2=0.067×(ΔA+0.0014)
V 样：加入样本体积：0.1mL；V 样总：加入提取液体积，1 mL；V 反总：反应体系总体积，0.3mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500 万；T：反应时间，120min；1000，μmol 到 nmol 转换系数；2，1 分子麦芽糖转化为 2 分子葡萄糖。

本产品只适用于科研，不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途！以实际收货产品说明书为准，网站说明书仅供参考。