α葡萄糖苷酶(α-GC)测试盒/分光光度法说明书

测定意义：

α-GC(EC 3.2.1.20)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，催化水解芳基或烃基与糖基之间的α-糖苷键生成葡萄糖，不仅与细胞壁的松弛或加固有关，而且与细胞识别和一些信号分子产生密切相关。

测定原理：

α-GC 分解对-硝基苯-α-D 吡喃葡萄糖苷生成对-硝基苯酚，后者在 400nm 有 吸收峰，通过测定吸光值升高速率来计算 α-GC 活性。

自备用品：
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

试剂组成和配制：
提取液：液体 50mL×1 瓶，4℃保存。
试剂一：粉剂×2 瓶，-20℃保存；临用前每瓶加入 10mL 蒸馏水，充分溶解备用；用不完的试剂仍-20℃保存。
试剂二：液体 25mL×1 瓶，4℃保存。
试剂三：液体 50mL×1 瓶，4℃保存。

粗酶液提取：
1、细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照细菌或细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液），超声波破碎细菌或细胞（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次）；15000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
2、组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 提取液），进行冰浴匀浆。15000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。
测定步骤：
1、 分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 400nm，蒸馏水调零。
2、 加样表

充分混匀，放入 37℃准确水浴 30min 后，立即放入 95℃水浴 5min（盖紧，以防止水分散失），流水冷却后充分混匀（以保证浓度不变），8000g，4℃，离心 5min，取上清液

充分混匀，室温静置 2min 后， 400nm 处测定吸光值 A，计算 ΔA=A 测定管-A 对照管。每个测定管需设一个对照管。
α-GC 活力计算：
标准条件下测定的回归方程为 y =0.00543x -0.0027；x 为标准品浓度（nmol/mL），y 为吸光值。
（1）按样本蛋白浓度计算：
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟产生 1nmol 对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。
α-GC 活力(nmol/min/mg prot)=[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反总]÷(V 样×Cpr)÷T=61.39×(ΔA+0.0027) ÷Cpr
需要另外测定，建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒。
（2）按样本鲜重计算：
单位的定义：每 g 组织每分钟产生 1nmol 对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。
α-GC 活力(nmol/min /g 鲜重)＝[(ΔA+0.0027)÷0.00543×V 反总]÷(W×V 样÷V 样总)÷T=61.39×(ΔA+0.0027) ÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1nmol 对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。
α-GC 活力(nmol/min /104 cell)=[(ΔA+0.0027) ÷0.00543×V 反总]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.123×(ΔA +0.0027)
V 反总：反应体系总体积，1mL；V 样：加入反应体系中样本体积，0.1mL；V 样总：加入提取液体积，1mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g； 500：细胞或细菌总数，500 万；T：反应时间，30min。

本产品只适用于科研，不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途！以实际收货产品说明书为准，网站说明书仅供参考。