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内切-β-1,4-葡聚糖酶(Cx)测试盒/微量法
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1-51265 /盒
5-101175 /盒
≥101085 /盒
  • 品牌:联迈生物
  • 产地:上海
  • 型号:100管/48样
  • 货号:LM-877334S
  • 发布日期: 2022-11-16
  • 更新日期: 2025-04-28
产品详请
产地 上海
品牌 联迈生物
货号 LM-877334S
用途 采用3,5-二硝基水杨酸法测定Cx催化羧甲基纤维素钠降解产生的还原糖的含量。
包装规格 100管/48样
纯度 99%
CAS编号
是否进口

内切-β-1,4-葡聚糖酶(Cx)测试盒/微量法说明书

注 意 :正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义:

Cx(EC3.2.1.4)存在于细菌、真菌和动物体内,是纤维素酶系的组份之一,Cx主要作用于非晶态纤维素和水溶性纤维素衍生物,随机水解糖苷键,将其分解成葡萄糖、纤维二糖、纤维三糖和其他寡聚体。

测定原理:

采用3,5-二硝基水杨酸法测定Cx催化羧甲基纤维素钠降解产生的还原糖的含量。
需自备的仪器和用品: 
酶标仪/可见分光光度计、水浴锅、离心机、可调式移液器、96 孔板/微量石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂的组成和配制: 
提取液:液体 100mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 6mL×1 瓶,4℃保存;
试剂二:液体 25mL×1 瓶,4℃保存;
样品测定的准备: 
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
3、血清(浆)样品:直接检测。
 
测定步骤: 
1、 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 540nm,蒸馏水调零。
2、加样表(在 EP 管中依次加入下列试剂):

2022111604182968993

混匀, 90℃水浴 10min(盖紧,防止水分散失),冷却后,取 200μL 至微量石英比色皿或 96 孔板中,测540nm 下吸光值 A,计算 ΔA=A 测定管-A 对照管。每个测定管需设一个对照管。

Cx 活性计算:
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
1、标准条件下测定回归方程为 y = 6.4078x - 0.0673;x 为标准品浓度(mg/mL),y 为吸光值。
2、血清(浆)Cx 活力的计算
单位的定义:每 mL 血清(浆)每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min/mL)= [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反总]÷V 样÷T=14.305×(ΔA+0.0673)
3、细胞、细菌和组织中 Cx 活力的计算
(1)按照蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min/mg prot)=[ [1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反总]÷(V 样×Cpr) ÷T=14.305×(ΔA+0.0673) ÷Cpr
(2)按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min /g 鲜重)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反总]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=14.305×(ΔA+0.0673) ÷W
(3)按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min /104 cell)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷6.4078×V 反总]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T=0.0286×(ΔA+0.0673)1000:1mg/mL=1000ug/mL;V 反总:反应体系总体积,0.11mL; V 样:加入样本体积,0.01 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,120 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
b.用 96 孔板测定的计算公式如下
1、标准条件下测定回归方程为 y = 3.2039x - 0.0673;x 为标准品浓度(mg/mL),y 为吸光值。
2、血清(浆)Cx 活力的计算
单位的定义:每 mL 血清(浆)每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min/mL)= [1000×(ΔA+0.0673) ÷3.2039×V 反总]÷V 样÷T=28.61×(ΔA+0.0673)
3、细胞、细菌和组织中 Cx 活力的计算
(1)按照蛋白浓度计算
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min/mg prot)=[ [1000×(ΔA+0.0673) ÷3.2039×V 反总]÷(V 样×Cpr) ÷T=28.61×(ΔA+0.0673) ÷Cpr
(2)按样本鲜重计算
单位的定义:每 g 组织每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min /g 鲜重)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷3.2039×V 反总]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=28.61×(ΔA+0.0673) ÷W
(3)按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟催化产生 1μg 葡萄糖定义为一个酶活力单位。
Cx 活力(μg /min /104 cell)=[1000×(ΔA+0.0673) ÷3.2039×V 反总]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T=0.057×(ΔA+0.0673)1000:1mg/mL=1000ug/mL;V 反总:反应体系总体积,0.11mL; V 样:加入样本体积,0.01 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,120 min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。

本产品只适用于科研,不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途!以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。

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