硫氧还蛋白过氧化物酶（TPX）活性测定试剂盒说明书

测定意义：
TPX 属于过氧化物酶家族，在体内主要通过还原过氧化氢和一些氢过氧化物来实现抗氧化作用，功能与 GPX 类似，也是谷胱甘肽氧化还原循环关键酶之一。TPX 普遍存在于各种生物体内，如酵母、植物、动物、原生动物、寄生虫、细菌和古细菌，在进化上高度保守。 TPX 与细胞增殖、分化、细胞凋亡及肿 瘤发生调控密切相关。TPX 的主要功能包括细胞脱毒、抗氧化和调节由过氧化氢介导的信号转导和免疫反应。

测定原理：

TPX 催化 H2O2 氧化二硫苏糖醇（DTT），H2O2 的吸收波长为 240nm，通过测定 240nm 吸光度的下降速率，即可计算出 TPX 活性。

自备仪器和用品:
低温离心机、水浴锅、可调节移液器、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板（UV 板）、和蒸馏水

试剂组成和配制:
试剂一：液体 120mL×1 瓶，室温保存。
试剂二：液体 20mL×1 瓶，- 20℃保存。
试剂三：液体 2mL×1 支，4℃。

粗酶液提取：
1. 组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL 试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心 10min，取上清置冰上待测。
2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104 个）：试剂一体积（mL）为 500~1000：1 的比例（建议 500万细胞加入 1mL 试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率 300w，超声 3 秒，间隔 7 秒，总时间 3min）；然后 8000g，4℃，离心 10min，取上清置于冰上待测。
3. 血清等液体：直接测定。
TPX 测定操作：
取微量石英比色皿或 96 孔板，加入 4 μL 上清液，180 μL 试剂二，16 μL 试剂三，迅速混匀后于240 nm 测定 10s 和 130s 吸光度，记为 A1 和 A2。
TPX 活性计算公式：
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下
(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：25℃或者 37℃中，每毫克蛋白每分钟催化 1nmol H2O2 降解为 1 个酶活单位。TPX（nmol/min /mg prot）=(A1－A2)÷ε÷d×V 反总÷（Cpr×V 样）÷T=573×(A1－A2)÷Cpr
(2). 按样本质量计算
活性单位定义：25℃或者 37℃中，每克样本每分钟催化 1nmol H2O2 降解为 1 个酶活单位。 TPX活性（nmol/min/g 鲜重）=(A1－A2)÷ε÷d×V 反总÷(W×V 样÷V 样总)÷T=573×(A1－A2)÷W
（3）按细胞数量计算
活性单位定义：25℃或者 37℃中，每 104 个细胞每分钟催化 1nmol H2O2 降解为 1 个酶活单位。

本产品只适用于科研，不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途！以实际收货产品说明书为准，网站说明书仅供参考。