线粒体转氢酶-2（TH-2）试剂盒说明书

注 意 ：正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义：
TH 位于线粒体的内膜上，又称为线粒体复合体六，催化 NADH+NADP+和 NAD++NADPH 相互转化，调 节 线 粒 体  nad(h) 和  nadp (h) 平 衡。把逆向反应称为 TH-2，催化 NADPH 和 NAD+生成 NADP+和 NADH。

测定原理：

NADH 和 NADPH 均在 340nm 有特征吸收，因此 TH 催化的转氢反应不能导致 340nm 吸光度发生变化。用人工合成底物 3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸（APAD+）替代 NAD+，TH-2 催化 APAD+还原生成 APADH，APADH 在 375nm 有特征光吸收，测定 375nm 光吸收的增加速率，来计算 TH-2 活性。

需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

试剂的组成和配制：
试剂一：液体 50mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂二：液体 25mL×1 瓶，-20℃保存；
试剂三：液体 25mL×2 瓶，4℃保存；
试剂四：粉剂×2 支，-20℃保存；
试剂五：粉剂×2 支，-20℃保存；

样本的前处理：
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离：
① 准确称取 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞，加入 1mL 试剂一，用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
② 将匀浆 600g，4℃离心 5min。
③ 弃沉淀，将上清液移至另一离心管中，11100g，4℃离心 10min。
④ 上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白，可用于测定从线粒体泄漏的 TH-2（此步可选做）。
⑤ 步骤④中的沉淀即为线粒体，加入 500uL 试剂二，超声波破碎（冰浴，功率 20％或 200W，超声 3s，间隔 10 秒，重复 30 次），用于 TH-2 活性测定。

测定步骤：
1、 分光光度计预热 30min 以上，调节波长至 375nm，蒸馏水调零。
2、 样本测定
（1）工作液的配制：临用前取试剂三、试剂四和试剂五各一支，将试剂四、五转移到试剂三中混合溶解，置于 37℃（哺乳动物）或 25℃（其它物种）水浴 5min；用不完的试剂分装后-20℃保存，禁止反复冻融。
（2）在 1mL 玻璃比色皿中加入 100μL 样本和 1000μL 工作液，混匀，立即记录 375nm 处初始吸光值 A1和 10min 后的吸光值 A2，计算ΔA=A2-A1。

TH-2 活性计算：
（1） 按样本蛋白浓度计算
单位的定义：每 mg 组织蛋白每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(V 样×Cpr)÷T=164×ΔA÷Cpr
（2） 按样本鲜重计算
单位的定义：每 g 组织每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性（nmol/min/g 鲜重）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=82×ΔA÷W
（3） 按细菌或细胞密度计算
单位的定义：每 1 万个细菌或细胞每分钟产生 1 nmol APADH 定义为一个酶活性单位。
TH-2 活性（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V 反总÷（ε×d）×109]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T=0.164×ΔA
V 反总：反应体系总体积，1.1×10-3L；ε：APADH 摩尔消光系数，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V 样：加入样本体积，0.1mL；V 样总：加入提取液体积，0.5mL；T：反应时间，10 min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本质量，g；500：细菌或细胞总数，500 万。

本产品只适用于科研，不能用于临床诊断。严禁用于临床医疗及其他非科研用途！以实际收货产品说明书为准，网站说明书仅供参考。